15858283923

Статья

Статьи

Вы находитесь здесь:ГлавнаяСтатьиКаковы подробные этапы работы с прибором для измерения силы клеточной адгезии?

Каковы подробные этапы работы с прибором для измерения силы клеточной адгезии?

Дата обновления: 2025-09-25Количество просмотров: 424
  Прибор для измерения силы клеточной адгезии— специализированный прибор для точного измерения сил взаимодействия между клетками и субстратом, важный для клеточной биологии, биомедицинской инженерии и смежных областей. Он помогает понять поведение клеток и механизмы заболеваний и разрабатывать новые методы лечения. Например, система CellHesion 200 немецкой компании JPK измеряет взаимодействия клетка–клетка и клетка–субстрат, количественно определяет эластичность клеток и реакцию на внешнее механическое давление и даёт количественные результаты на уровне одиночной клетки с точностью до одной молекулы. Инновационный метод обеспечивает высококачественные данные, а ПО автоматически определяет ключевые параметры силы клеточной адгезии.
  Прибор для измерения силы клеточной адгезииПорядок работы:
  I. Подготовка эксперимента
  Выбор матриксного белка
  Выберите подходящий белок, например коллаген, фибронектин или ламинин, с учётом цели. Приготовьте его в PBS в подходящей концентрации, например 2-10μg/mL, и равномерно покройте дно планшета, например 96-луночного. Инкубируйте ночь при 4°C либо 1-2 часа при 37°C для иммобилизации белка.
  Блокирование неспецифических участков связывания
  Блокируйте планшет при комнатной температуре раствором 1%BSA (бычий сывороточный альбумин) или 10% фетальной бычьей сывороткой в течение 30 минут–1 часа, чтобы уменьшить неспецифическую адгезию клеток.
  Подготовка клеток
  Выберите клетки в логарифмической фазе роста, обработайте трипсином, соберите центрифугированием и ресуспендируйте в бессывороточной среде. Установите концентрацию 5×10⁴-5×10⁵/mL с учётом типа клеток.
  II. Настройка прибора
  Калибровка датчика
  Согласно руководству откалибруйте датчик силы эталонным образцом, например клетками или материалом с известной адгезией, обеспечив точность измерения с типичным разрешением 0.1nN.
  Настройка параметров
  Время контакта: задайте время контакта клетки с матриксом согласно опыту, например 5, 10, 15, 20 или 25 минут.
  Скорость отвода: задайте скорость отвода зонда, например 1μm/s, для стабильного динамического измерения.
  Контроль среды: при наличии соответствующего модуля задайте температуру 37°C, CO₂ 5% и другие параметры, имитирующие физиологические условия.
  III. Обработка и посев клеток
  Посев клеток
  Внесите суспензию в предварительно покрытый матриксным белком планшет по 5000-1×10⁵ клеток на лунку с поправкой на размер планшета; используйте 3-5 повторных лунок для уменьшения ошибки.
  Инкубация
  Инкубируйте планшет при 37°C и 5% CO₂ в течение заданного времени для полного прикрепления клеток.
  IV. Измерение
  Удаление неприкрепившихся клеток
  После инкубации осторожно промойте планшет предварительно нагретым PBS 2-3 раза, удаляя неприкрепившиеся клетки.
  Фиксация клеток (необязательно)
  Для длительного хранения или последующего окрашивания фиксируйте клетки в 4% параформальдегиде 15-20 минут, затем промойте PBS.
  Запуск измерения
  Механический метод: опускайте полый зонд до контакта с поверхностью клетки. Остановите при достижении заданного порога выхода датчика, например 50nN. После заданного времени контакта отведите зонд с установленной скоростью, например 1μm/s, на расстояние 60μm и запишите кривую сила–перемещение.
  Флуоресцентный метод: при флуоресцентной метке измерьте интенсивность на планшетном ридере, например для кальцеина при длине волны возбуждения 488nm и эмиссии 520nm. Интенсивность пропорциональна числу прикрепившихся клеток.
  Микрофлюидный метод: создайте в микроканале сдвиговую силу, например 0.5-5 dyn/cm², чтобы имитировать физиологический поток и в реальном времени отслеживать динамику адгезии.
  V. Запись и анализ данных
  Извлечение ключевых параметров
  Из кривой сила–перемещение извлеките максимальную силу адгезии, время, площадь и другие параметры либо рассчитайте долю адгезии по флуоресценции: доля адгезии = (OD экспериментальной группы / OD группы максимальной адгезии) × 100%.
  Статистический анализ
  Используйте GraphPad Prism или другое ПО для ANOVA, рассчитайте стандартное отклонение и коэффициент вариации и подтвердите статистическую значимость при p<0.05.
  Визуализация
  Постройте кривые силы адгезии во времени, столбчатые диаграммы доли адгезии и другие графики и объедините их с микроскопическими изображениями, например после окраски кристаллическим фиолетовым или по Гимзе, для наглядного представления.
  VI. Очистка после эксперимента
  Очистка прибора
  Очистите зонды, культуральные чашки и другие компоненты деионизованной водой или специальным средством, чтобы остатки не повлияли на следующий опыт.
  Выключение прибора
  Последовательно выключите модуль контроля среды, оптический модуль и программную систему, затем отключите питание.
  Резервное копирование данных
  Сохраните исходные данные на локальном диске или в облачном хранилище и создайте запись опыта для прослеживаемости.

Сервисная линия
15858283923

Отсканируйте QR-код, чтобы добавить нас в WeChat