Прибор для измерения силы клеточной адгезии— специализированный прибор для точного измерения сил взаимодействия между клетками и субстратом, важный для клеточной биологии, биомедицинской инженерии и смежных областей. Он помогает понять поведение клеток и механизмы заболеваний и разрабатывать новые методы лечения. Например, система CellHesion 200 немецкой компании JPK измеряет взаимодействия клетка–клетка и клетка–субстрат, количественно определяет эластичность клеток и реакцию на внешнее механическое давление и даёт количественные результаты на уровне одиночной клетки с точностью до одной молекулы. Инновационный метод обеспечивает высококачественные данные, а ПО автоматически определяет ключевые параметры силы клеточной адгезии.
I. Подготовка эксперимента
Выбор матриксного белка
Выберите подходящий белок, например коллаген, фибронектин или ламинин, с учётом цели. Приготовьте его в PBS в подходящей концентрации, например 2-10μg/mL, и равномерно покройте дно планшета, например 96-луночного. Инкубируйте ночь при 4°C либо 1-2 часа при 37°C для иммобилизации белка.
Блокирование неспецифических участков связывания
Блокируйте планшет при комнатной температуре раствором 1%BSA (бычий сывороточный альбумин) или 10% фетальной бычьей сывороткой в течение 30 минут–1 часа, чтобы уменьшить неспецифическую адгезию клеток.
Подготовка клеток
Выберите клетки в логарифмической фазе роста, обработайте трипсином, соберите центрифугированием и ресуспендируйте в бессывороточной среде. Установите концентрацию 5×10⁴-5×10⁵/mL с учётом типа клеток.
II. Настройка прибора
Калибровка датчика
Согласно руководству откалибруйте датчик силы эталонным образцом, например клетками или материалом с известной адгезией, обеспечив точность измерения с типичным разрешением 0.1nN.
Настройка параметров
Время контакта: задайте время контакта клетки с матриксом согласно опыту, например 5, 10, 15, 20 или 25 минут.
Скорость отвода: задайте скорость отвода зонда, например 1μm/s, для стабильного динамического измерения.
Контроль среды: при наличии соответствующего модуля задайте температуру 37°C, CO₂ 5% и другие параметры, имитирующие физиологические условия.
III. Обработка и посев клеток
Посев клеток
Внесите суспензию в предварительно покрытый матриксным белком планшет по 5000-1×10⁵ клеток на лунку с поправкой на размер планшета; используйте 3-5 повторных лунок для уменьшения ошибки.
Инкубация
Инкубируйте планшет при 37°C и 5% CO₂ в течение заданного времени для полного прикрепления клеток.
IV. Измерение
Удаление неприкрепившихся клеток
После инкубации осторожно промойте планшет предварительно нагретым PBS 2-3 раза, удаляя неприкрепившиеся клетки.
Фиксация клеток (необязательно)
Для длительного хранения или последующего окрашивания фиксируйте клетки в 4% параформальдегиде 15-20 минут, затем промойте PBS.
Запуск измерения
Механический метод: опускайте полый зонд до контакта с поверхностью клетки. Остановите при достижении заданного порога выхода датчика, например 50nN. После заданного времени контакта отведите зонд с установленной скоростью, например 1μm/s, на расстояние 60μm и запишите кривую сила–перемещение.
Флуоресцентный метод: при флуоресцентной метке измерьте интенсивность на планшетном ридере, например для кальцеина при длине волны возбуждения 488nm и эмиссии 520nm. Интенсивность пропорциональна числу прикрепившихся клеток.
Микрофлюидный метод: создайте в микроканале сдвиговую силу, например 0.5-5 dyn/cm², чтобы имитировать физиологический поток и в реальном времени отслеживать динамику адгезии.
V. Запись и анализ данных
Извлечение ключевых параметров
Из кривой сила–перемещение извлеките максимальную силу адгезии, время, площадь и другие параметры либо рассчитайте долю адгезии по флуоресценции: доля адгезии = (OD экспериментальной группы / OD группы максимальной адгезии) × 100%.
Статистический анализ
Используйте GraphPad Prism или другое ПО для ANOVA, рассчитайте стандартное отклонение и коэффициент вариации и подтвердите статистическую значимость при p<0.05.
Визуализация
Постройте кривые силы адгезии во времени, столбчатые диаграммы доли адгезии и другие графики и объедините их с микроскопическими изображениями, например после окраски кристаллическим фиолетовым или по Гимзе, для наглядного представления.
VI. Очистка после эксперимента
Очистка прибора
Очистите зонды, культуральные чашки и другие компоненты деионизованной водой или специальным средством, чтобы остатки не повлияли на следующий опыт.
Выключение прибора
Последовательно выключите модуль контроля среды, оптический модуль и программную систему, затем отключите питание.
Резервное копирование данных
Сохраните исходные данные на локальном диске или в облачном хранилище и создайте запись опыта для прослеживаемости.